O transporte e a transmissão de bactérias do complexo Xanthomonas vesicatoria pelas sementes de tomate é um dos principais mecanismos de sobrevivência e disseminação do patógeno para novas áreas. O presente trabalho foi desenvolvido com o objetivo de elucidar o processo de infecção e colonização das sementes, plântulas e mudas de tomate. Foram realizados experimentos utilizando o isolado ENA 4463 de X. vesicatoria e a cultivar Santa Clara Miss Brasil, cujas sementes foram inoculadas a vácuo ou por injeção de suspensão bacteriana na região da placenta de frutos verdes. O semeio foi feito em caixas Gerbox, contendo papel germitest, bandejas de alumínio contendo areia ou bandejas de isopor (128 células), contendo substrato comercial para produção de mudas. As avaliações nos testes em Gerbox foram feitas ao longo de seis dias por isolamentos diretos e indiretos em meio NA para quantificação da população bacteriana associada aos diferentes órgãos das plântulas. Nos testes de emergência em areia e em substrato, foram realizadas avaliações ao longo de 30 dias utilizando os mesmos procedimentos. A fitobactéria foi facilmente reisolada do tegumento ao longo dos primeiros seis dias e da radícula, do hipocótilo e folhas cotiledonares logo após a sua emissão aos dois e três dias do semeio, respectivamente. A máxima população de X. vesicatoria foi observada às 48 h após o semeio por ocasião da emissão da radícula. Nos experimentos em areia e em substrato comercial, observou-se que a bactéria, a partir do tegumento, coloniza todos os órgãos da planta à medida que estes são emitidos. A bactéria pode sobreviver como residente na raiz, hipocótilo, folhas cotiledonares e definitivas até pelo menos 30 dias após o semeio, sem necessariamente causar sintomas.
Transmission of Xanthomonas vesicatoria by seeds is one of the major sources of inoculum for development of epidemic bacterial spot. The aim in this work was elucidating the process of infection and colonization of tomato seeds and seedlings by these bacteria. Three experiments were carried out using X. vesicatoria, ENA 4463 isolate, and tomato seeds from Santa Clara Miss Brasil cultivar. Seeds were inoculated using vacuum or by injection of bacterial suspension in the region of the placenta of green fruits. Sowing was done in Gerbox boxes, aluminum or Styrofoam trays (128 cells) containing germitest paper, sand or commercial substrate for seedlings, respectively. Seedlings in Gerbox were assessed along six days by the quantification of bacterial population associated to different organs, through direct and indirect isolation on NA medium. In sand and commercial substrate, assessments were carried out until 30 days using the same procedures. Bacteria was easily isolated from the coat along the first six days, and from radicles, hypocotyls and cotyledon leaves just after the organs appearance, at two or three days after sowing, respectively. Maximum population of Xanthomonas vesicatoria was observed at 48 hours after sowing at the time of radicle protrusion. In sand and commercial substrate experiments, the bacteria colonized all plant organs and this process occurred as they arose. These bacteria can survive as resident at roots, epicotyls, cotyledon and definitive leaves until, at least, 30 days after sowing, not necessarily causing symptoms.
